流式细胞仪（分选用）

1. 样本制备的浓度和体积有什么要求？

分选样本浓度建议在1～5X107/ml。稀有样本的最小体积不得小于 200ul。待分选的细胞用无血清培养基悬浮。

2. 分选有荧光的细胞，需要准备什么样本？

首次做荧光分选，要准备未染色的样本、同型对照、每一种荧光的单染对照，待分选的细胞。

3. 除了准备细胞，还要准备什么？

准备接收细胞的培养基；接收细胞的容器，包括1.5ml tube、5ml试管、各种规格培养皿、多孔培养板及96孔板。在接收容器中加入培养基和/或血清，以防止细胞破碎。

4. 制备分选样本时需要注意什么？

无菌操作。所有的实验用品、试剂以及仪器本身等，都应做无菌处理。

5. 需要准备多少细胞量？

真正参与分选活动的活细胞大约只占初始细胞总量的一半。根据目标细胞在样本中占的比例，计算出必要的细胞总数，要准备出比计算的细胞总数多出2～3倍的量，才能保证得到回收的细胞数量。

6. 分选后的细胞如何处理？

分选后的细胞不经过任何处理直接培养，细胞贴壁后换液。如果要离心，建议使用离心力1500g。

流式细胞仪（分析用）

1. 如何获得独立操作资格?

使用流式细胞仪分析样本的用户，经过管理员培训，能够独立操作仪器，并且态度认真、具有责任心的用户，经管理员认定可获得仪器的独立操作资格，签署“独立用户声明”后将可预约和使用非工作时间段的机时。

2. 非工作时间如何使用中心仪器?

具备独立操作资格的用户可以在非工作时间使用中心的仪器，不具备独立操作资格的用户不得在非工作时间使用中心的仪器。

3. 如何拷贝数据?

用户不得使用U盘等移动存储器从中心所有仪器附带的计算机上直接拷贝数据，可使用CD刻录数据，将数据传输到专门用来处理数据的计算机上，再使用U盘等移动存储器拷贝数据。

4. 如何保护数据?

重要的数据请立即拷贝。流式用户很多，防备有人误操作，丢失数据。

5. 没有鞘液怎么办？

用干净的容器从Millipore纯水仪直接接水，加入鞘液筒即可。

6. 使用过的样本和样本管如何处理？

PI染料染色的样本和试管测试完成后直接扔到垃圾桶中。其他染色的试管要回收，放到盛有水的水槽中，以备后续处理。